|
肥胖基因和瘦素
中华内分泌代谢杂志
CHINESE JOURNAL OF ENDOCRINOLOGY AND METABOLISM
1999年第15卷第2期Vol.15No.2 1999
徐淑静 徐明彤 傅祖植
关键词:肥胖基因 瘦素(leptin)
1956年Kennedy提出一个设想〔1〕(lipostasis theory):脂肪组织能产生一种物质,通过作用于下丘脑的代谢控制中枢,影响机体的能量摄入和消耗以调节体重和体脂量。Coleman进行的联体共生实验(parabiotic experiment)显示〔2〕:以存在ob(obese)等位基因突变的肥胖小鼠(ob/ob)与正常小鼠(+/+)相连,结果使ob/ob鼠摄食减少而体重下降,说明ob/ob鼠的肥胖可被来自正常鼠血液中的调节体重的物质所纠正;其次以ob/ob鼠与具有db突变的肥胖糖尿病小鼠(db/db)相连,ob/ob鼠摄食极度减少而饥饿致死;另外db/db鼠与正常鼠相连,结果亦使正常鼠饥饿而死,提示db/db鼠体内存在大量调节体重的物质,而对其不敏感。ob基因和db基因的编码产物是配基和受体的关系。近年把这种ob基因的编码产物称为leptin(源于希腊语leptos,意为“瘦的”,中文译作瘦素),已证实是脂肪细胞分泌的一种激素,由于其具有调节体重的作用而日益受到重视。
一、ob基因和ob基因缺陷
1994年Zhang等利用定位克隆技术首次成功地克隆了小鼠的ob基因及人类的同源序列〔3〕,至今ob基因的定位和结构已明确。小鼠ob基因位于第6号染色体,人类ob基因位于第7号染色体的q31.3。ob基因长约20kb,由3个外显子和2个内含子组成,其编码区位于第2和第3外显子。在部分正常的啮齿类动物和人类中可见49位谷氨酰胺密码子的缺失,此多态性的意义尚不清楚。在5’侧翼区域中包含了TATA盒样的序列和数个顺式调控元件(3个拷贝的GC盒、AP-2结合位点和C/EBP结合位点)〔3,4〕。ob基因编码4.5 kb mRNA,含一个高度保守的能编码167个氨基酸的开放读码框架,其5’端有97bp的先导序列,3’端是3.7kb的非翻译序列。ob基因的表达具有脂肪组织特异性,且只有成熟的脂肪细胞才有表达。在啮齿类动物和人类的各种器官中进行ob mRNA的检测,结果在脑、心、肺、胰、肝、骨胳肌中均未检出,但在大网膜、后腹膜、肠系膜及皮下脂肪组织中却明显可见,尤以皮下脂肪组织最多〔5〕。
目前已在两种遗传性肥胖鼠中发现ob基因突变,致leptin合成受阻〔3〕。在C57BL/6J ob/ob鼠中发现ob基因第105位精氨酸密码子发生了无义突变,产生大量缺陷的ob mRNA,血中没有功能性的leptin。在SM/Ckc+Dacob2J/ob2J鼠系由于ob基因启动子区发生变异,致不能转录ob mRNA。在这两种鼠系的血循环中均缺乏leptin。在其它啮齿类先天肥胖动物如db/db小鼠、fa/fa大鼠〔6〕,及获得性肥胖的动物模型中,如过量摄食导致肥胖的小鼠、谷氨酸钠注射致VMH损伤小鼠及棕色脂肪缺失小鼠〔7〕,均未检测到ob基因突变。在人类(白种人、亚洲人)肥胖者及2型糖尿病患者筛查ob基因突变的研究中,大部分没有检测到突变,仅Considine筛查到一例ob基因编码序列的变异,在94位由蛋氨酸代替了缬氨酸。提示大多数肥胖者的肥胖并不是由于ob基因突变所致〔8,9〕。
二、Leptin
ob基因编码产物是一种由167个氨基酸组成的蛋白质,在分泌入血过程中去除其中由21个氨基酸组成的N-端信号肽,形成leptin。成熟的leptin含146个氨基酸,分子量为16KD,具有强亲水性,以单体形式存在于血浆中。人和鼠的leptin氨基酸序列有84%的同源性〔3〕。
1.影响leptin水平的因素:循环中leptin浓度与脂肪组织ob mRNA的量相关。leptin水平受多种因素调节,普遍认为机体的体脂量是影响leptin水平的主要因素。脂肪组织体积或热卡摄取量的变化可影响ob mRNA和leptin的浓度。血leptin浓度和脂肪组织ob mRNA的量与体重指数(BMI)、尤其与体脂百分含量呈 正相关关 系〔10,11〕。体重减轻,ob mRNA减少,leptin水平降低;反之,体重增加,ob mRNA升高,leptin水平增高。在体脂无明显变化的情况下,空腹可降低ob mRNA及血leptin浓度,而进食可恢复其浓度。短时间内过量摄食(12小时内120cal/kg)可使血leptin浓度在无体重增加的情况下升高40%〔12〕。肥胖者脂肪细胞ob mRNA及血平均leptin浓度明显大于体重正常者。同一个体中大的脂肪细胞比较小的脂肪细胞含ob mRNA更多,推测脂肪细胞的大小可能是ob mRNA表达的一个主要决定因素。目前尚不清楚是细胞壁的伸展、或储存的甘油三酯增多,还是细胞内存在一种特殊的代谢决定着ob mRNA的量。
研究表明胰岛素也是ob基因表达的重要调节因素。链脲佐菌素引起的糖尿病动物模型ob mRNA减少90%,而用胰岛素治疗后ob mRNA的量得到一定恢复〔13〕。在体外实验中,胰岛素可显著增加脂肪细胞ob mRNA及leptin的产生。皮下注射胰岛素使小鼠ob mRNA增多,用正常血糖和高血糖胰岛素钳夹技术进一步研究获得一致结果〔12〕。Malmstrom等对正常人及2型糖尿病患者用高胰岛素钳夹技术的研究发现:空腹血浆胰岛素与血浆leptin浓度正相关,输入胰岛素后血浆leptin浓度明显升高〔14〕。Widjaja等对三组不同种族2型糖尿病患者的研究结果显示,血浆leptin浓度与空腹胰岛素浓度相关,用胰岛素治疗的糖尿病患者leptin浓度和胰岛素浓度均明显高于用其它方案治疗者〔15〕。以上结果均提示胰岛素有调节leptin浓度的作用。
在不同的人群中的研究提示种族和年龄对血leptin浓度的影响不大,但不同性别血leptin浓度却有显著差异。Ostlund报道〔11〕即使是在体脂百分含量相同的情况下,女性血leptin浓度是男性的3倍(1.71μg/L vs 5.80μg/L),此性别差异是否与女性更易于积聚脂肪有关尚待研究。
2.Leptin的转运及leptin受体:Housenecht的研究〔16〕表明分泌到血液中的leptin大部分通过与血清蛋白结合来运输。在人类至少有两种leptin结合蛋白,相对分子质量分别为176 000和240 000,估计游离的leptin才具有生物活性。Leptin是大分子物质,通过血脑屏障 时需要特定 的途径。Banks等〔17〕用125I标记leptin的研究发现,leptin向脑脊液的转运具有饱和性和限制性,血清leptin浓度约25μg/L时达到饱和,超过此浓度时脑脊液中leptin浓度不再随血leptin浓度增加而呈比例增加。平均血leptin浓度较正常体重高300%的肥胖个体,其脑脊液leptin浓度仅增加30%。Leptin向脑脊液转运的饱和性可能是极度肥胖者发生leptin抵抗的原因之一,但不是肥胖的原发因素。因为通常在血leptin浓度达到25μg/L之前就有肥胖的发生。
继ob基因的克隆,小鼠的leptin受体基因及其人类同源序列也相继得到了克隆。Leptin受体基因在大脑脉络丛、下丘脑、肝脏、胰脏、肺脏及肾脏等多个部位均有表达,此与leptin具有广泛的生物效应有关〔18〕。目前已发现C57BL/KsJ db/db小鼠和Zucker fatty (fa/fa)大鼠的leptin受体基因发生突变,血leptin浓度升高,具有肥胖表型,而对外源性leptin无反应〔19〕。在人类迄今还没有发现leptin受体的突变〔20〕。
3.Leptin的生物学效应:目前的研究表明leptin具有广泛的生物学效应,其中较重要的是作用于下丘脑的体重调节中枢,引起食欲降低、能量消耗增加从而减轻体重〔21,22〕。Pelleymounter等给C57BL/6J ob/ob鼠每日腹腔内注射leptin,结果使小鼠体重减轻,脂肪量减少,摄食量以及血糖和胰岛素浓度降低,其代谢率、体温和活动量有所提高。Halaas等有类似报道,他们配比喂养两组性别、鼠龄和体重相匹配的ob/ob鼠,实验组每日腹腔内注射leptin,12天后其体重减轻程度明显大于对照组(分别减轻16g和11g,P<0.02)。这些结果说明不能只用摄食量来解释leptin诱导的体重下降。研究者认为leptin至少在两方面增强了动物的能量利用:增加活动和加快代谢。Leptin也可使野生型(+/+)鼠的体重减轻,但所需剂量较大。进一步的研究表明leptin与下丘脑的leptin受体结合后可能通过抑制神经肽Y(NPY)的合成与释放来实现其调节体重的作用的〔23〕。肥胖动物NPY基因在下丘脑的表达增加。给ob/ob鼠腹腔注射重组leptin在使摄食量减少56%的同时,下丘脑弓状核的NPY mRNA减少42.3%。另有学者发现leptin能直接抑制NPY的释放。
另一方面,有学者认为leptin可能作为脂肪——胰岛内分泌轴的一部分,参与胰岛素分泌的调节。Kieffer的动物实验结果显示leptin(100ng/ml)可抑制ob/ob鼠胰岛分泌胰岛素。Emilsson更发现leptin浓度≥10nmol/L对胰岛素分泌有抑制作用,而低浓度(1nmol/L)无抑制作用。胰岛β细胞内有leptin受体的存在。leptin可致ob/ob鼠β细胞Ca?明显降低,伴有细胞膜的超极化及膜传导的增强,可激活ATP敏感的钾离子通道(KATP),而KATP特异性抑制剂甲磺丁脲可逆转上述的leptin的作用,提示leptin作为胰岛素分泌的抑制剂具有重要的生理作用。leptin抑制胰岛素分泌,而胰岛素可刺激leptin的释放。可见,在脂肪组织和β细胞之间通过leptin和胰岛素形成一个双向的反馈环〔24〕。
近年的研究还发现leptin可恢复雌性ob/ob鼠的生育力〔25〕。雌性ob/ob鼠早期的性发育正常,但其发育程度停留在青春期前。用重组leptin治疗除可减轻体重外,尚可恢复其生育力,而单用饮食控制无此作用,提示leptin在正常生殖功能的调节中起一定作用,其机理尚有待于进一步研究。
4.肥胖个体中的Leptin抵抗现象:Leptin对体脂和体重的调节存在一个反馈系统,当机体体脂量增加时,血leptin水平升高,作用于下丘脑的调节中枢令摄食减少、能量消耗增加;反之,当机体体脂量减少时,血leptin水平亦减少,其通过中枢进行相应的摄食和能量输出的调节。
在一些啮齿类先天肥胖动物(如db/db小鼠和fa/fa大鼠)和过量摄食导致的肥胖动物中,肥肪组织ob mRNA表达增加,血leptin水平升高。说明这些动物体内对leptin的反应减弱或无反应,这种现象称为leptin抵抗,表明ob基因表达下游环节存在障碍〔6,7〕。人类肥胖者也存在leptin抵抗现象〔11〕,由于在大多数肥胖者中未筛查到ob基因变异,推测此leptin抵抗现象在人类肥胖的发生中起重要作用。已发现db/db鼠和fa/fa鼠的leptin基因发生突变,致下丘脑leptin受体发生变异而不能与leptin结合〔19〕。但对人类leptin受体的研究迄今未发现突变的存在〔20〕。人类的leptin抵抗现象不能用leptin受体基因的异常来解释。其可能的原因有:血循环中存在leptin的抗体或拮抗物;或是血循环中leptin结合蛋白的增加令游离的leptin减少;血脑屏障的leptin转运饱和现象等;更为引起研究者重视的是下丘脑中leptin信号系统与其它体重调节因子之间的失衡,如NPY系统。Leptin抵抗发生的确切机制还有待于进一步的研究。
ob基因的发现时间不长,目前的研究大多局限于动物实验和离体实验,尚存在许多问题有待进一步的研究。如leptin受体广泛存在于周围组织中,其生理作用除了已知的体重调节、胰岛素分泌调节和对生殖的作用外还有什么?leptin产生的调节机制?肥胖者的leptin抵抗现象的原因何在?ob基因信号系统在肥胖症及其相关疾病如2型糖尿病、冠心病、高血压及高脂血症等的发生中的作用是什么?ob基因的发现对研究肥胖及其相关疾病的发病机制具有重要意义。
作者单位:徐淑静 CMB资助国内访问学者 550004 贵阳医学院附属医院内分泌科;中
徐明彤 傅祖植 山医科大学孙逸仙纪念医院内分泌科
参考文献
1 Kennedy GD. The role of depot fat in the hypothalamic control of food intake in the rat. Proc Royal Soc Biol Sci, 1953,140:578-592.
2 Coleman DL. Effects of parabiosis of obese with diabetes and normal mice. Diabetologia, 1973,9:294-298.
3 Zhang YY, Proenca R, Maffei M, et al. Positional cloning of the mouse obese gene and its human homologue. Nature, 1994,372:425-432.
4 Isse N, Ogawa Y, Tamura N, et al. Structural organization and chromosomal assignment of the human obese gene. J Biol Chem, 1995,270:27728-27733.
5 Masuzaki H, Ogawa Y, Isse N, et al. Human obese gene expression. Adipocyte-specific expression and regional differences in the adipose tissue. Diabetes, 1995,44:855-858.
6 Ogawa Y, Masuzaki H, Isse N, et al. Molecular cloning of rat obese cDNA and augmented gene expression in genetically obese Zucker fatty (fa/fa) rats. J Clin Invest, 1995,96:1647-1652.
7 Masuzaki H, Ogawa Y, Hosoda K, et al. Augmented expression of obese in the adipose tissue from rats fed high-fat diet. Biochem Biophy Res Commun, 1995,216:355-358.
8 Niki T, Mori H, Taori Y, et al. Human obese gene. Molecular screening in Japanese and Asian Indian NIDDM patients associated with obesity. Diabetes, 1996,45:657-678.
9 Considine RV, Considine EL, Williams CJ, et al. Mutation screening and identification of a sequence variation in the human OB gene coding region. Biochem Biophy Res Commun, 1996,220:735-739.
10 Considine RV, Sinha MK, Heiman ML, et al. Surum immunoreative-leptin concentrations in normal-weight and obese humans. New Engl J Med, 1996,334:292-295.
11 Ostlund RE, Yang JW, Klein S, et al. Relation between plasma leptin concentration and body fat, gender, diet, age, and metabolic covariates. J Clin Endocrinol Metab, 1996,81:3909-3913.
12 Saladin R, De Vos P, Guerre-Millo M, et al. Transient increase in obese gene expression after food intake or insulin administration. Nature, 1995,377:527-529.
13 MacDougald OA, Cheng SH, Fan HY, et al. Regulated expression of the obese gene product (leptin) in white adipose tissue and 3T3-L1 adipocytes. Proc Natl Acad Sci USA, 1995,92:9034-9037.
14 Malmstrom R, Taskinen MR, Karonen SL, et al. Insulin increases plasma leptin concentrations in normal subjects and patients with NIDDM, Diabetologia, 1996,39:993-996.
15 Widjaja A, Strattom IM, Horn R, et al. Plasma leptin, obesity, and plasma insulin in type 2 diabetic subjects. J Clin Endocrinol Metab, 1997,82:654-657.
16 Houseknecht KL, Mantzoros CS, Kuliawat R, et al. Evidence for letpin binding to proteins in serum of rodents and humans: modulation with obesity. Diabetes, 1996,45:1638-1643.
17 Banks WA, Kastin AJ, Huang W, et al. Leptin enters the brain by a saturable system independent of insulin. Peptides, 1996,17:305-311.
18 Tartaglia LA, Dembski M, Weng X, et al. Identification and expression cloning of a leptin receptor, OB-R. Cell, 1995,83:1263-1271.
19 Chua JR SC, Chung WK, Wu-Peng S, et al. Phenotypes of mouse diabetes and rat fatty due to mutations in the OB (Leptin) receptor. Science, 1996,271:994-996.
20 Considine RV, Considine EL, Williams CJ, et al. The hypothalamic leptin receptor in humans. Indentification of incidental sequence polymorphisms and absence of the db/db mouse and fa/fa rat mutations. Diabetes, 1996,45:992-994.
21 Pelleymounter MA, Cullen MJ, Baker MB, et al. Effects of the obese gene product on body weight regulation in ob/ob mice. Science, 1995,269:540-543.
22 Halaas JL, Gajiwala KS, Maffei M, et al. Weight-reducing effects of the plasma protein encoded by the obese gene. Science, 1995,269:543-546.
23 Stphens TW, Basinski M, Bristow PK, et al. The role of neuropeptide Y in the antiobesity action of the obese gene product. Nature, 1995,377:530-532.
24 Kieffer TJ, Heller RS, Leech CA, et al. Leptin suppression of insulin secretion by the activation of ATP-sensitive K+ channels in pancreatic β-cells. Diabetes, 1997,46:1087-1093.
25 Zamorano PL, Mahesh VB, de Sevilla LM, et al. Expression and localization of the leptin receptor in endocrine and neuroendocrine tissues of the rat. Neuroendocrinology, 1997,65:223-228.
(收稿:1998-01-19 修回:1998-08-25)
|